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Jun 01, 2023

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Biologie des communications volume 6, Numéro d'article : 572 (2023) Citer cet article

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La souris de laboratoire a fourni d’énormes connaissances sur les fondements de la physiologie du système nerveux central des mammifères. Ces dernières années, il est devenu possible d'imager des neurones uniques, des cellules gliales et vasculaires in vivo en utilisant des préparations fixées à la tête combinées à des fenêtres crâniennes pour étudier les réseaux locaux d'activité dans le cerveau vivant. De telles approches ont également réussi sans que l’anesthésie générale ne fournisse un aperçu des comportements naturels du système nerveux central. Cependant, il n’en va pas encore de même pour l’œil, qui est constamment en mouvement. Nous caractérisons ici une nouvelle préparation à tête fixe qui permet une imagerie rétinienne par optique adaptative haute résolution au niveau unicellulaire chez des souris éveillées. Nous révélons trois nouveaux attributs fonctionnels de l'œil normal qui sont négligés par l'anesthésie : 1) Les mouvements oculaires à haute fréquence et de faible amplitude de la souris, présents uniquement à l'état éveillé. 2) Le flux sanguin unicellulaire dans la rétine de la souris est réduite sous anesthésie et 3) Les rétines de souris s'épaississent en réponse à l'anesthésie à la kétamine/xylazine. Nous montrons ici les principaux avantages de la préparation éveillée qui permet l’étude de la physiologie rétinienne sans anesthésie pour étudier la physiologie rétinienne normale chez la souris.

La souris de laboratoire est un modèle indispensable pour la recherche biomédicale en raison de sa taille, de son accessibilité, de son catalogue génétique séquencé et de sa capacité à modéliser certains aspects des maladies humaines. En particulier, cela a permis d’étudier l’anatomie et la fonction de l’œil des mammifères qui, outre sa taille et l’absence notable de fovéa, ressemble à bien des égards à l’œil humain1. Pour obtenir une imagerie rétinienne à haute résolution chez la souris, une anesthésie est généralement nécessaire pour stabiliser la préparation et supprimer les mouvements oculaires, ce qui rend les évaluations fonctionnelles au niveau cellulaire presque impossibles2. Certaines approches ont démontré que l’imagerie rétinienne de souris est possible avec une contention des mains3,4. Cependant, l’utilité de cette approche est destinée à des fins photographiques à instantané unique et ne fournit pas un axe optique stable essentiel aux mesures fonctionnelles.

L'anesthésie générale fournit une préparation in vivo stabilisée et atténue les mouvements oculaires ; cependant, cela peut également altérer la fonction physiologique normale, limitant ainsi l'interprétation des mesures in vivo, en particulier celles du fonctionnement du système nerveux central (SNC)5,6. À cette fin, les neuroscientifiques comportementaux et physiologiques ont développé des préparations à tête fixe pour stabiliser le cerveau pour l'électrophysiologie et la microscopie in vivo7, évitant ainsi le recours à l'anesthésie. Notamment, des études ont signalé diverses différences neurophysiologiques clés entre l’état éveillé et l’état anesthésié8,9. Une autre conséquence de l’anesthésie pour la recherche sur la vision est qu’elle supprime le mouvement oculaire naturel qui fournit un contraste spatio-temporel au système visuel. La suppression du mouvement naturel des yeux modifie fondamentalement la cinétique spatio-temporelle de la production de cellules ganglionnaires vers le noyau géniculé latéral, le colliculus supérieur et les études sur le cortex visuel chez la souris10. Il a également été rapporté que la locomotion dans une préparation éveillée modifie considérablement la réponse physiologique du cortex visuel11, mais les mécanismes ne sont pas entièrement compris. Par conséquent, laisser le mouvement oculaire intact pourrait faire progresser la compréhension du comportement oculomoteur de la souris et, en particulier, de la manière dont le mouvement oculaire biologique peut avoir un impact sur la physiologie visuelle de base.

En plus des avantages de préserver le mouvement oculaire et d’éliminer les confusions liées à l’anesthésie, l’imagerie de la souris éveillée peut également faciliter l’imagerie rétinienne sous plusieurs aspects supplémentaires. Premièrement, l’imagerie de l’animal éveillé peut empêcher l’opacification optique due à une anesthésie prolongée, ce qui constitue un défi considérable pour l’imagerie oculaire chez la souris anesthésiée12. Deuxièmement, la thermorégulation n’est pas nécessaire lors de l’imagerie de la souris éveillée, ce qui a montré un impact sur la physiologie homéostatique13. Et enfin, la souris éveillée maintient une clarté oculaire normale en clignant des yeux et en rafraîchissant constamment le film lacrymal sans avoir besoin de lentilles de contact ni de lubrification, ce qui pourrait perturber les conditions comportementales ou optiques naturelles14.

10%), we evaluated SLO videos captured at 8.8 frames per second (fps). We found 94.75 ± 11.13% of the frames were unclipped for the 2.0 mm beam (Mean ± SD, N = 5 mice) and 99.78 ± 0.30% of frames were unclipped when using a 1.6 mm beam. The small fraction of pupil clipping in either the spatial or temporal analysis was attributed mostly to gaze behavior of the mouse rather than lack of stability of the headplate preparation. The pupil stability was also examined by comparing the pupil position to relative to the simultaneously recorded gait velocity. There was no correlation between the beam clipping or pupil centration with the locomotion behavior. This suggests pupil stability was attributed to a stably fixed headplate (Fig. 2d). Both the spatial and temporal analysis suggest that the pupil is stable, even under locomotion up to 0.8 m/s (approximately ¼th the top speed of an unrestrained mouse). Thus, the awake mouse eye preparation lends itself favorable for continuous retinal imaging that facilitates functional optophysiology in more natural conditions./p>5˚, rapid (~50˚/s), and rare (~7 per minute in mouse, compared to multiple saccades per second in the human). As mice lack a fovea, these gaze shifts are not true saccades that re-center the image on the fovea22, but may instead represent a redistribution of the visual scene on areas denser with photoreceptors or smaller ganglion cell receptive fields which reside near the optical axis of the eye23. Twenty minutes of semi-continuous video tracking of the mouse retina, gaze behavior showed a clustered pattern of persistence over several preferred gaze directions suggesting a natural resting position of the eye, or preferred gaze direction based on visual features within the laboratory room. To determine the persistence of the gaze positions, the data was then split and normalized to the local mean position for every 10 s. Using this analysis, we found the retinal position stayed within 5˚ of the visual angle 80.02 ± 0.065% of the time within the 10-s windows, which corresponds to the typical video acquisition window of high-resolution AOSLO imaging. This is relevant for high-resolution imaging as the subtended field for AOSLO imaging is typically 5˚, suggesting that offline image registration may correct motion by strip or frame registration approaches without “frame-out” errors which make image registration based on common features or cross-correlation approaches challenging24./p>30 Hz). Bottom: trace of the eye motion velocity. c Fourier transform of the eye motion trace (unfiltered). Power were observed up to 200 Hz. Two prominent low-frequency peaks were observed respectively at 2 Hz (120 bpm) and 9 Hz (540 bpm), which may be contributed by the respiratory and heartbeats. d Fourier transform of the eye motion velocity. Elevated power at 30–200 Hz were observed, indicating the bandwidth of the eye tremor./p>200 Hz to achieve diffraction-limited potential in the awake mouse./p>

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